酿酒酵母感受态细胞
产品规格（CAT#: YCL1020）
Y187 Chemically-Library Competent Cell: 600μl/支 保存： -80℃（3个月）
pGADT7 (control vector, 10 ng/μl) 10μl 保存：-80℃（12个月）
Carrier DNA (10 μg/μl) 300μl/1.2ml 保存：-20℃（12个月）
PEG/LiAC: 15ml/60ml 保存： 4℃（12个月）
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产品名称 |
产品货号 |
产品规格 |
产品配套 |
说明书下载 |
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Y187 文库化转感受态细胞 |
YCL1020S |
5×600ul |
Carrier DNA 300ul×1
PEG/LiAC 15ml×1 |
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| YCL1020M | 20×600ul |
Carrier DNA 1.2ml×1 PEG/LiAC 60ml×1 |
MATα, ura3-52, his3-200, ade 2-101, trp 1-901, leu 2-3, 112, gal4Δ, met-, gal80Δ, URA3::GAL1UAS-GAL1TATA-lacZ, MEL1
产品说明
Y187菌株是Clontech公司开发的GAL4系统酵母单杂，双杂实验用菌株，MATα型，可直接转化质粒或与MATa型酵母菌株 (Y2HGold，AH109等)通过mating操作进行筛库试验。Transformation marker为: trp1, leu2，报告基因为：lacZ，MEL1。Y187-GAL4酵母双杂系统需要两种质粒配套使用：pGBKT7和pGADT7。质粒pGBKT7的筛选标志为TRP1，用于表达DNA-BD (来自酵母转录因子GAL4N端1~174位氨基酸)与目标蛋白 (Bait)的融合蛋白；质粒pGADT7的筛选标志为LEU，用于表达AD (GAL4 C端768~881位氨基酸)与目标蛋白 (Prey)的融合蛋白。GAL4系统原理：一个完整的酵母转录因子GAL4可分为功能上相互独立的两个结构域：位于N端1~174位氨基酸区段的DNA结合域 (DNA-BD)和位于C端768~881位氨基酸区段的转录激活域 (AD)。DNA-BD能够识别GAL4-responsive gene的上游激活序列UAS，并与之结合。而AD可以启动UAS下游的基因进行转录。BD和AD单独存在不能激活转录，但当二者接近时，则呈现完整的GAL4活性，使含有UAS的启动子下游基因转录表达。正常条件下，BD不与AD结合，将要检测的蛋白质分别与BD和AD融合，形成 bait融合蛋白 (bait –BD)和 prey融合蛋白 (prey-AD)，如果 bait和 prey发生相互作用，就会促使 BD和 AD的相互接近，形成完整的GAL4，从而激活报告基因的转录。Y187有两个报告基因：lacZ，MEL1，分别由两种不同的启动子 (G1，M1)启动，这两种启动子只有GAL4识别的17 bp核心区相同，其余部分均不同，大大降低了酵母双杂假阳性发生的概率。Y187 Chemically-Library Competent Cell为构建酵母文库用化转感受态，经特殊工艺制作，-80℃可保存三个月，pGADT7质粒（7988bp，AmpR）检测转化效率>0.5×106 cfu/μg DNA。
操作方法
1. Carrier DNA 的预处理：将Carrier DNA 插入95℃金属浴5 min或插入浮漂中95℃水浴3 min，加热后快速插入冰中。
2. 取600 µl冰上融化的Y187感受态细胞，依次加入预冷的目的质粒2-15 µg(加入DNA的体积不超过50ul，DNA纯度越高越好)，预处理的Carrier DNA 60 µl，PEG/LiAc 1ml，吸打几次混匀，转移到事先准备好的10ml圆底离心管中，补加PEG/LiAc 2ml，混匀，30℃水浴60 min (30 min时翻转6-8次混匀)。
3. 将管放42℃水浴20 min (10 min时翻转6-8次混匀)。
4. 5000 rpm离心 2 min弃上清，ddH2O 10ml重悬，离心2min弃上清，ddH2O 1-10ml重悬，涂板，29℃培养48-96 h。
5. 为提高转化效率也可5000 rpm离心 2 min弃上清后加入3ml YPD Plus重悬，30℃，200rpm摇菌1.5h。离心2min弃上清，加入1-10ml 0.9%的氯化钠重悬涂板。
培养基配制
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① YPDA (1L) (唯地CAT#：YM1020): Tryptone 20g Yeast extract 10g 0.2% adenine 15ml 补水到 950ml，用盐酸调PH到6.5； Agar 20g(for plates only) 121℃，15 min高压灭菌； 待培养基温度降到55℃时，加入已过滤的40% 葡萄糖 50 ml。
③ 0.2% adenine (0.5L) (唯地CAT#：YC6030) Adenine 1g； 补水到0.5L；溶解后高压灭菌或0.22µm 滤膜过滤除菌。
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② SD medium (1L)(唯地CAT#：YM3101-YM3611): Yeast Nitrogen base 6.7g 葡萄糖 20g Dropout 适量（按说明书） 补水到1L，调PH至5.8； Agar 20g(for plates only) 121℃，15 min高压灭菌。 |
注意事项
1. 感受态细胞最好在冰上融化，加入质粒DNA的体积不超过50ul，文库质粒纯度越高越好。
2. 文库用酵母感受态的转化效率数据是在加入不超过100ng标准质粒的试验中获得，若加入质粒过多，虽然得到的菌落数会增加，但由此计算的转化效率会下降。
3. Y187酵母菌株对高温敏感，最适生长温度为27-30℃；高于31℃，生长速度和转化效率下降。
4. 菌落变粉不是污染，是酵母细胞生长中一个常见现象。当细胞在平板培养几天后，平板上的Adenine被酵母消耗完毕，酵母试图通过自身代谢途径合成Adenine以供利用，然而，有些菌株的ADE2基因被破坏，Adenine合成途径受阻；又由于其ADE4,5,6,7,8基因均正常，所以造成中间产物P-ribosylamino imidazole (AIR) 在细胞中积累而使菌落变为粉红色。
5. 酵母在缺陷培养基中生长速度比YPDA培养基慢，培养基中缺陷成分越多，生长越慢。以转化涂板为例：涂YPDA平板29℃，48 h培养可见直径1 mm克隆；涂SD单缺平板29℃，48-60 h培养可见直径1 mm克隆，涂SD双缺平板29℃，60-80 h培养可见直径1 mm克隆，涂SD三缺或四缺平板平板29℃，80-90h培养可见直径1 mm克隆。
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产品名称 |
产品货号 |
产品规格 |
产品配套 |
说明书下载 |
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Y187 文库化转感受态细胞 |
YCL1020S |
5×600ul |
Carrier DNA 300ul×1
PEG/LiAC 15ml×1 |
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| YCL1020M | 20×600ul |
Carrier DNA 1.2ml×1 PEG/LiAC 60ml×1 |
MATα, ura3-52, his3-200, ade 2-101, trp 1-901, leu 2-3, 112, gal4Δ, met-, gal80Δ, URA3::GAL1UAS-GAL1TATA-lacZ, MEL1
产品说明
Y187菌株是Clontech公司开发的GAL4系统酵母单杂，双杂实验用菌株，MATα型，可直接转化质粒或与MATa型酵母菌株 (Y2HGold，AH109等)通过mating操作进行筛库试验。Transformation marker为: trp1, leu2，报告基因为：lacZ，MEL1。Y187-GAL4酵母双杂系统需要两种质粒配套使用：pGBKT7和pGADT7。质粒pGBKT7的筛选标志为TRP1，用于表达DNA-BD (来自酵母转录因子GAL4N端1~174位氨基酸)与目标蛋白 (Bait)的融合蛋白；质粒pGADT7的筛选标志为LEU，用于表达AD (GAL4 C端768~881位氨基酸)与目标蛋白 (Prey)的融合蛋白。GAL4系统原理：一个完整的酵母转录因子GAL4可分为功能上相互独立的两个结构域：位于N端1~174位氨基酸区段的DNA结合域 (DNA-BD)和位于C端768~881位氨基酸区段的转录激活域 (AD)。DNA-BD能够识别GAL4-responsive gene的上游激活序列UAS，并与之结合。而AD可以启动UAS下游的基因进行转录。BD和AD单独存在不能激活转录，但当二者接近时，则呈现完整的GAL4活性，使含有UAS的启动子下游基因转录表达。正常条件下，BD不与AD结合，将要检测的蛋白质分别与BD和AD融合，形成 bait融合蛋白 (bait –BD)和 prey融合蛋白 (prey-AD)，如果 bait和 prey发生相互作用，就会促使 BD和 AD的相互接近，形成完整的GAL4，从而激活报告基因的转录。Y187有两个报告基因：lacZ，MEL1，分别由两种不同的启动子 (G1，M1)启动，这两种启动子只有GAL4识别的17 bp核心区相同，其余部分均不同，大大降低了酵母双杂假阳性发生的概率。Y187 Chemically-Library Competent Cell为构建酵母文库用化转感受态，经特殊工艺制作，-80℃可保存三个月，pGADT7质粒（7988bp，AmpR）检测转化效率>0.5×106 cfu/μg DNA。
操作方法
1. Carrier DNA 的预处理：将Carrier DNA 插入95℃金属浴5 min或插入浮漂中95℃水浴3 min，加热后快速插入冰中。
2. 取600 µl冰上融化的Y187感受态细胞，依次加入预冷的目的质粒2-15 µg(加入DNA的体积不超过50ul，DNA纯度越高越好)，预处理的Carrier DNA 60 µl，PEG/LiAc 1ml，吸打几次混匀，转移到事先准备好的10ml圆底离心管中，补加PEG/LiAc 2ml，混匀，30℃水浴60 min (30 min时翻转6-8次混匀)。
3. 将管放42℃水浴20 min (10 min时翻转6-8次混匀)。
4. 5000 rpm离心 2 min弃上清，ddH2O 10ml重悬，离心2min弃上清，ddH2O 1-10ml重悬，涂板，29℃培养48-96 h。
5. 为提高转化效率也可5000 rpm离心 2 min弃上清后加入3ml YPD Plus重悬，30℃，200rpm摇菌1.5h。离心2min弃上清，加入1-10ml 0.9%的氯化钠重悬涂板。
培养基配制
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① YPDA (1L) (唯地CAT#：YM1020): Tryptone 20g Yeast extract 10g 0.2% adenine 15ml 补水到 950ml，用盐酸调PH到6.5； Agar 20g(for plates only) 121℃，15 min高压灭菌； 待培养基温度降到55℃时，加入已过滤的40% 葡萄糖 50 ml。
③ 0.2% adenine (0.5L) (唯地CAT#：YC6030) Adenine 1g； 补水到0.5L；溶解后高压灭菌或0.22µm 滤膜过滤除菌。
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② SD medium (1L)(唯地CAT#：YM3101-YM3611): Yeast Nitrogen base 6.7g 葡萄糖 20g Dropout 适量（按说明书） 补水到1L，调PH至5.8； Agar 20g(for plates only) 121℃，15 min高压灭菌。 |
注意事项
1. 感受态细胞最好在冰上融化，加入质粒DNA的体积不超过50ul，文库质粒纯度越高越好。
2. 文库用酵母感受态的转化效率数据是在加入不超过100ng标准质粒的试验中获得，若加入质粒过多，虽然得到的菌落数会增加，但由此计算的转化效率会下降。
3. Y187酵母菌株对高温敏感，最适生长温度为27-30℃；高于31℃，生长速度和转化效率下降。
4. 菌落变粉不是污染，是酵母细胞生长中一个常见现象。当细胞在平板培养几天后，平板上的Adenine被酵母消耗完毕，酵母试图通过自身代谢途径合成Adenine以供利用，然而，有些菌株的ADE2基因被破坏，Adenine合成途径受阻；又由于其ADE4,5,6,7,8基因均正常，所以造成中间产物P-ribosylamino imidazole (AIR) 在细胞中积累而使菌落变为粉红色。
5. 酵母在缺陷培养基中生长速度比YPDA培养基慢，培养基中缺陷成分越多，生长越慢。以转化涂板为例：涂YPDA平板29℃，48 h培养可见直径1 mm克隆；涂SD单缺平板29℃，48-60 h培养可见直径1 mm克隆，涂SD双缺平板29℃，60-80 h培养可见直径1 mm克隆，涂SD三缺或四缺平板平板29℃，80-90h培养可见直径1 mm克隆。
