分类

毕赤酵母感受态细胞

● 电转感受态
KM71 Elec-Competent Cell

产品规格 (CAT#: PE1003)

KM71 Elec-Competent Cell:                         80μl/支             保存: -80℃(3个月)

1M 山梨醇溶液(0.45um过滤除菌)               10ml                保存:4℃(12个月)

pPIC9K (control vector, 10 ng/μl)                   10μl                 保存:-80℃(12个月)

产品名称
产品货号
产品规格
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电转KM71 感受态细胞
PE1003S 10×80ul

PE1003M 50×80ul


基因型

his4, aox1::ARG4, arg4


表型(Phenotype)

MutS, Arg+, His


产品说明

KM71菌株是由invitrogen公司开发专门用于重组蛋白表达的毕赤酵母菌株。KM71是组氨酸缺陷型菌株,基因组中组氨酸脱氢酶(His4)基因位点产生突变,自身无法合成组氨酸;部分携带HIS筛选标记的毕赤酵母表达质粒(pPIC3.5K/pPIC9K/pAO815等)可以表达HIS4基因,与KM71互补,通过组氨酸缺陷培养基来筛选整合成功的阳性转化子;其他无HIS筛选标记的毕赤酵母表达质粒(pPICZ A, B, C,pPICZα A, B, C等)也可通过Zeocin或盐酸博来霉素筛选阳性转化子。KM71毕赤酵母的表型为MutS, Arg+, His,His表示KM71是组氨酸缺陷型菌株,不能在组氨酸缺陷型培养基中生长;Arg+表示KM71的亲本菌在精氨酸琥珀酸裂解酶基因(arg4)有突变,在AOX1基因位点引入野生型ARG4基因同时破坏了AOX1基因,产生了MutS表型;MutS表示KM71的AOX1基因功能被破坏(毕赤酵母是甲醇营养型酵母,可利用甲醇作为唯一碳源。甲醇代谢的第一步是:醇氧化酶利用氧分子将甲醇氧化为甲醛,毕赤酵母中有两个基因编码醇氧化酶:AOX1、AOX2,野生型毕赤酵母中大多数的醇氧化酶是 AOX1基因产物,甲醇可诱导 AOX1基因表达,AOX1蛋白产物最高可占细胞中可溶蛋白的30%以上,很多毕赤酵母表达质粒正是利用AOX1表达框进行外源基因表达的,若毕赤酵母含有有功能的AOX1基因就称为Mut+型;AOX2是AOX1的同源基因(97%的同源性),在缺失AOX1基因或AOX1基因丧失功能时,AOX2基因会发挥作用,产生一种表型为MutS的突变株,但AOX2基因氧化甲醇的能力比AOX1弱很多,结果是细胞代谢甲醇的能力下降,在甲醇培养基中生长缓慢。针对具体的蛋白,很难预测选择Mut+还是MutS作为宿主进行蛋白表达更好,虽然Mut+型酵母转录得到的mRNA更多,但超量的mRNA并不一定可以产生有活力的蛋白质;MutS型酵母虽然生长缓慢,转录得到的mRNA比Mut+少,但有可能更有利于蛋白形成正确构象,产生有活力的蛋白质)。KM71电转感受态细胞经特殊工艺制作,-80℃可保存三个月,线性化的pPIC9K质粒(9.3kb,AmpR in E.coli)检测转化效率>104 cfu/μg DNA。


操作方法

1. 取适量1M山梨醇溶液(0.45um过滤除菌)冰浴,每管感受态准备1ml。

2. 0.2 cm 电击杯和杯盖从储存液中拿出倒置于干净的吸水纸上5分钟沥干水分,正置5分钟,待乙醇挥发干净立即插入冰中,压实冰面,电击杯顶离冰面0.5 cm以方便盖上杯盖,冰中静置5分钟充分降温。

3. 取-80℃保存的KM71电击感受态细胞插入冰中2-5分钟,待其融化,加入2-10ug线性化的目的DNA (加入DNA的体积不超过8ul,DNA纯度越高越好,保证尽可能低的离子含量),立即插入冰中。

4. 用200 μl枪头(用刀切除0.5cm枪尖)将感受态-DNA混合物缓慢吹打两次,除去气泡,快速转移到电击杯中(避免产生气泡),轻轻晃动电击杯使液面保持水平状态,盖上杯盖,插入冰中。

5. 启动电转仪,设置参数:C=25 μF,PC=200 Ω,V=2kV,将电击杯从冰中拿出,用吸水纸擦拭吸干表面水渍,放入电转槽中,电击完成后拿出电转杯放室温,打开杯盖,10秒内加入1ml预冷的1M山梨醇溶液,转移到30℃静置2-3小时。

6. 将感受态-DNA混合物转移到离心管中,4000 rpm离心30秒收菌,弃上清,留50ul上清重悬后涂布到含相应抗生素的筛选平板上,将平板倒置放于30℃培养箱培养3-5天。


筛选培养基配制

1. KM71可用组氨酸缺陷培养基筛选阳性菌落,常用培养基为SD/–His固体培养基或MD培养基,配方如下:

  SD/–His with Agar(唯地CAT#:YM3101):

  Yeast Nitrogen base

  葡萄糖

  DO Supplement–His

  补水到1L,调PH至5.8

  Agar (for plates only)

  121℃,15 min高压灭菌。

1L

6.7g

20g

0.78g


20g

MD medium配方 :

Yeast Nitrogen base

葡萄糖

生物素( biotin)

补水到1L,调PH至7.0

Agar (for plates only)

121℃,15 min高压灭菌。

1L

6.7g

20g

0.0004g


20g


2. 无HIS筛选标记的毕赤酵母表达质粒转化KM71,可用YPDS+Zeocin/盐酸博莱霉素筛选,1L配方如下:

• 蛋白胨(peptone                           20g

• 酵母提取物(yeast extract              10g

• 山梨醇(sorbitol                       182.2 g

补水到 950ml,用盐酸调PH       7.0±0.2

     琼脂粉(agar                        20g(for plates only)

       121℃,20 min高压灭菌;待培养基温度降到55℃时,加入已过滤的50% 葡萄糖40 ml 

      加入100 mg/mlZeocin/盐酸博莱霉素母液到培养基中,终浓度100 ug/ml,倒平板。

      • 含有Zeocin/盐酸博莱霉素的YPDS可以在4°C保存两周(半衰期约10-15天)。


注意事项

1. 感受态细胞最好在冰上融化,转化高浓度的质粒可相应减少最终用于涂板的菌量,或使用更大的平板。

2. 关于Zeocin/盐酸博莱霉素的使用浓度:Zeocin抗性基因单拷贝插入毕赤酵母基因组可用100 ug/ml的Zeocin/盐酸博莱霉素浓度筛选;多拷贝整合可增加毕赤酵母对Zeocin/盐酸博莱霉素的抗性水平,每增加一个拷贝,Zeocin/盐酸博莱霉素的筛选浓度可增加200 ug/ml,所以为了筛选到高拷贝的蛋白表达框可增加抗生素的使用浓度到500, 1000, 甚至2000 μg/ml。

3. KM71酵母菌株对高温敏感,最适生长温度为27-30℃;高于31℃,生长速度和转化效率下降。

产品名称
产品货号
产品规格
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电转KM71 感受态细胞
PE1003S 10×80ul

PE1003M 50×80ul


基因型

his4, aox1::ARG4, arg4


表型(Phenotype)

MutS, Arg+, His


产品说明

KM71菌株是由invitrogen公司开发专门用于重组蛋白表达的毕赤酵母菌株。KM71是组氨酸缺陷型菌株,基因组中组氨酸脱氢酶(His4)基因位点产生突变,自身无法合成组氨酸;部分携带HIS筛选标记的毕赤酵母表达质粒(pPIC3.5K/pPIC9K/pAO815等)可以表达HIS4基因,与KM71互补,通过组氨酸缺陷培养基来筛选整合成功的阳性转化子;其他无HIS筛选标记的毕赤酵母表达质粒(pPICZ A, B, C,pPICZα A, B, C等)也可通过Zeocin或盐酸博来霉素筛选阳性转化子。KM71毕赤酵母的表型为MutS, Arg+, His,His表示KM71是组氨酸缺陷型菌株,不能在组氨酸缺陷型培养基中生长;Arg+表示KM71的亲本菌在精氨酸琥珀酸裂解酶基因(arg4)有突变,在AOX1基因位点引入野生型ARG4基因同时破坏了AOX1基因,产生了MutS表型;MutS表示KM71的AOX1基因功能被破坏(毕赤酵母是甲醇营养型酵母,可利用甲醇作为唯一碳源。甲醇代谢的第一步是:醇氧化酶利用氧分子将甲醇氧化为甲醛,毕赤酵母中有两个基因编码醇氧化酶:AOX1、AOX2,野生型毕赤酵母中大多数的醇氧化酶是 AOX1基因产物,甲醇可诱导 AOX1基因表达,AOX1蛋白产物最高可占细胞中可溶蛋白的30%以上,很多毕赤酵母表达质粒正是利用AOX1表达框进行外源基因表达的,若毕赤酵母含有有功能的AOX1基因就称为Mut+型;AOX2是AOX1的同源基因(97%的同源性),在缺失AOX1基因或AOX1基因丧失功能时,AOX2基因会发挥作用,产生一种表型为MutS的突变株,但AOX2基因氧化甲醇的能力比AOX1弱很多,结果是细胞代谢甲醇的能力下降,在甲醇培养基中生长缓慢。针对具体的蛋白,很难预测选择Mut+还是MutS作为宿主进行蛋白表达更好,虽然Mut+型酵母转录得到的mRNA更多,但超量的mRNA并不一定可以产生有活力的蛋白质;MutS型酵母虽然生长缓慢,转录得到的mRNA比Mut+少,但有可能更有利于蛋白形成正确构象,产生有活力的蛋白质)。KM71电转感受态细胞经特殊工艺制作,-80℃可保存三个月,线性化的pPIC9K质粒(9.3kb,AmpR in E.coli)检测转化效率>104 cfu/μg DNA。


操作方法

1. 取适量1M山梨醇溶液(0.45um过滤除菌)冰浴,每管感受态准备1ml。

2. 0.2 cm 电击杯和杯盖从储存液中拿出倒置于干净的吸水纸上5分钟沥干水分,正置5分钟,待乙醇挥发干净立即插入冰中,压实冰面,电击杯顶离冰面0.5 cm以方便盖上杯盖,冰中静置5分钟充分降温。

3. 取-80℃保存的KM71电击感受态细胞插入冰中2-5分钟,待其融化,加入2-10ug线性化的目的DNA (加入DNA的体积不超过8ul,DNA纯度越高越好,保证尽可能低的离子含量),立即插入冰中。

4. 用200 μl枪头(用刀切除0.5cm枪尖)将感受态-DNA混合物缓慢吹打两次,除去气泡,快速转移到电击杯中(避免产生气泡),轻轻晃动电击杯使液面保持水平状态,盖上杯盖,插入冰中。

5. 启动电转仪,设置参数:C=25 μF,PC=200 Ω,V=2kV,将电击杯从冰中拿出,用吸水纸擦拭吸干表面水渍,放入电转槽中,电击完成后拿出电转杯放室温,打开杯盖,10秒内加入1ml预冷的1M山梨醇溶液,转移到30℃静置2-3小时。

6. 将感受态-DNA混合物转移到离心管中,4000 rpm离心30秒收菌,弃上清,留50ul上清重悬后涂布到含相应抗生素的筛选平板上,将平板倒置放于30℃培养箱培养3-5天。


筛选培养基配制

1. KM71可用组氨酸缺陷培养基筛选阳性菌落,常用培养基为SD/–His固体培养基或MD培养基,配方如下:

  SD/–His with Agar(唯地CAT#:YM3101):

  Yeast Nitrogen base

  葡萄糖

  DO Supplement–His

  补水到1L,调PH至5.8

  Agar (for plates only)

  121℃,15 min高压灭菌。

1L

6.7g

20g

0.78g


20g

MD medium配方 :

Yeast Nitrogen base

葡萄糖

生物素( biotin)

补水到1L,调PH至7.0

Agar (for plates only)

121℃,15 min高压灭菌。

1L

6.7g

20g

0.0004g


20g


2. 无HIS筛选标记的毕赤酵母表达质粒转化KM71,可用YPDS+Zeocin/盐酸博莱霉素筛选,1L配方如下:

• 蛋白胨(peptone                           20g

• 酵母提取物(yeast extract              10g

• 山梨醇(sorbitol                       182.2 g

补水到 950ml,用盐酸调PH       7.0±0.2

     琼脂粉(agar                        20g(for plates only)

       121℃,20 min高压灭菌;待培养基温度降到55℃时,加入已过滤的50% 葡萄糖40 ml 

      加入100 mg/mlZeocin/盐酸博莱霉素母液到培养基中,终浓度100 ug/ml,倒平板。

      • 含有Zeocin/盐酸博莱霉素的YPDS可以在4°C保存两周(半衰期约10-15天)。


注意事项

1. 感受态细胞最好在冰上融化,转化高浓度的质粒可相应减少最终用于涂板的菌量,或使用更大的平板。

2. 关于Zeocin/盐酸博莱霉素的使用浓度:Zeocin抗性基因单拷贝插入毕赤酵母基因组可用100 ug/ml的Zeocin/盐酸博莱霉素浓度筛选;多拷贝整合可增加毕赤酵母对Zeocin/盐酸博莱霉素的抗性水平,每增加一个拷贝,Zeocin/盐酸博莱霉素的筛选浓度可增加200 ug/ml,所以为了筛选到高拷贝的蛋白表达框可增加抗生素的使用浓度到500, 1000, 甚至2000 μg/ml。

3. KM71酵母菌株对高温敏感,最适生长温度为27-30℃;高于31℃,生长速度和转化效率下降。