分类

酿酒酵母感受态细胞

● 化转感受态
WAT11 Chemically Competent Cell

产品规格 (CAT#: YC1120)

WAT11 Competent Cell:                                      100μl/支              保存:  -80℃(3个月)

pYES2 (control vector, 10 ng/μl)                                10μl              保存:-80℃(12个月)

Carrier DNA (10 μg/μl)                                             100μl              保存:-20℃(12个月)

PEG/LiAC:                                                                    5ml              保存:    4℃(12个月)

产品名称
产品货号
产品规格
说明书下载
WAT11 感受态细胞
YC1120S 10×100ul

YC1120M 50×100ul


基因

MATα, ade2-1, his3-11,-15, can1-100, leu2-3,-112, ura3-1, trp1-1, GAL10-CYC1:: ATR1


产品说明

WAT11菌株来源于W303-1B 酵母菌株,将酵母菌内源的细胞色素P450还原酶替换成拟南芥的细胞色素P450还原酶(Arabidopsis thaliana NADPH-cytochrome P-450 reductase / ATR1)即是WAT11,此菌株可诱导表达拟南芥P450还原酶,具有更高的P450还原酶活性和更加完善的电子传递系统,广泛用于各种代谢途径的研究或P450参与的通路研究。筛选标记(Transformation marker)为:trp1,leu2,his3,ura3,可配合诱导型质粒pYES2、pESC-HIS/LEU/TRP/URA或组成型表达质粒pGBKT7/ pGADT7等使用。WAT11感受态细胞经特殊工艺制作,-80℃可保存三个月,pYES2质粒(5857bp,AmpR)检测转化效率>104 cfu/μg DNA。


操作方法

1. Carrier DNA 的预处理:将Carrier DNA 插入95℃金属浴5 min或插入浮漂中95℃水浴3 min,加热后快速插入冰中。

2. 取100 µl冰上融化的WAT11感受态细胞,依次加入预冷的目的质粒2-5 µg,预处理后的Carrier DNA 10 µl,PEG/LiAc 500 µl并吸打几次混匀,30℃水浴30 min (15 min时翻转6-8次混匀)。

3. 将管放42℃水浴15 min (7.5 min时翻转6-8次混匀)。

4. 5000 rpm离心 40 s弃上清,ddH2O 400 µl 重悬,离心 30s弃上清。

5. ddH2O 50 µl重悬,涂板(筛选平板可根据转化质粒的筛选标记选择SD缺陷型平板),29℃培养48-96 h。


● P450还原酶的诱导表达

1. WAT11菌株中的P450还原酶由GAL10-CYC1启动子驱动,在进行诱导表达时,要去除培养基中的葡萄糖,加入2%的半乳糖或同时分别加入2%的半乳糖和1%棉子糖。两种碳源配方都可以诱导P450还原酶的表达,但在只添加半乳糖的培养基中酵母生长缓慢,蛋白表达量低;同时添加棉子糖可提高P450还原酶的表达量。

2. 半乳糖的诱导时间以至少12小时为宜,不同的实验要求,实验者可根据需要确定诱导时间。


培养基配制

① YPDA (1L) (唯地CAT#:YM1020):      

     Tryptone                          20g

     Yeast extract                    10g

     0.2% adenine                  15ml

     补水到 950ml,用盐酸调PH到6.5;

     Agar          20g(for plates only)

     121℃,15 min高压灭菌;

     待培养基温度降到55℃时,加入已过滤的40% 葡萄糖 50 ml。


③ 0.2% adenine (1L) (唯地CAT#:YC6030)

   Adenine    2g; 补水到1L;溶解后高压灭菌或0.22µm 滤膜过滤除菌。


④ pYES2蛋白诱导用诱导培养基:SGR/-Ura (唯地CAT#:YEM3134):

pESC-HIS/LEU/TRP/URA蛋白诱导分别用诱导培养基:SGR/-His、SGR/-Leu、SGR /-Trp、SGR/-Ura(唯地CAT#:YEM3131/3132/3133/3134),1L配方如下:

   Yeast Nitrogen base                        6.7g

   Dropout (对应的氨基酸混合物)    适量(按说明书)

   补水到 800ml,调PH至5.8,121℃,15 min高压灭菌;

   待培养基温度降到55℃时,加入已过滤的carbon source:100 ml 20% 半乳糖,100 ml 10% 棉子糖。

② SD medium (1L) (唯地CAT#:YM3101-YM3611):

     Yeast Nitrogen base                   6.7g

     葡萄糖                                           20g

     Dropout                    适量(按说明书)

     补水到1L,调PH至5.8;

     Agar                     20g(for plates only)

     121℃,15 min高压灭菌。



注意事项

1. 感受态细胞最好在冰上融化,转化高浓度的质粒可相应减少最终用于涂板的菌量,同时转化2-3种质粒时可增加质粒的用量。

2. WAT11酵母菌株对高温敏感,最适生长温度为27-30℃;高于31℃,生长速度和转化效率呈指数下降。

3. 菌落变粉不是污染,是酵母细胞生长中一个常见现象。当细胞在平板培养几天后,平板上的Adenine被酵母消耗完毕,酵母试图通过自身代谢途径合成Adenine以供利用,然而,有些菌株的ADE2基因被破坏,Adenine合成途径受阻;又由于其ADE4,5,6,7,8基因均正常,所以造成中间产物P-ribosylamino imidazole (AIR) 在细胞中积累而使菌落变为粉红色。

4. 酵母在缺陷培养基中生长速度比YPDA培养基慢,培养基中缺陷成分越多,生长越慢,以转化涂板为例:涂YPDA平板29℃,48 h培养可见直径1 mm克隆;涂SD单缺平板29℃,48-60 h培养可见直径1 mm克隆,涂SD双缺平板29℃,60-80 h培养可见直径1 mm克隆,涂SD三缺或四缺平板平板29℃,80-90h培养可见直径1 mm克隆。

产品名称
产品货号
产品规格
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WAT11 感受态细胞
YC1120S 10×100ul

YC1120M 50×100ul


基因

MATα, ade2-1, his3-11,-15, can1-100, leu2-3,-112, ura3-1, trp1-1, GAL10-CYC1:: ATR1


产品说明

WAT11菌株来源于W303-1B 酵母菌株,将酵母菌内源的细胞色素P450还原酶替换成拟南芥的细胞色素P450还原酶(Arabidopsis thaliana NADPH-cytochrome P-450 reductase / ATR1)即是WAT11,此菌株可诱导表达拟南芥P450还原酶,具有更高的P450还原酶活性和更加完善的电子传递系统,广泛用于各种代谢途径的研究或P450参与的通路研究。筛选标记(Transformation marker)为:trp1,leu2,his3,ura3,可配合诱导型质粒pYES2、pESC-HIS/LEU/TRP/URA或组成型表达质粒pGBKT7/ pGADT7等使用。WAT11感受态细胞经特殊工艺制作,-80℃可保存三个月,pYES2质粒(5857bp,AmpR)检测转化效率>104 cfu/μg DNA。


操作方法

1. Carrier DNA 的预处理:将Carrier DNA 插入95℃金属浴5 min或插入浮漂中95℃水浴3 min,加热后快速插入冰中。

2. 取100 µl冰上融化的WAT11感受态细胞,依次加入预冷的目的质粒2-5 µg,预处理后的Carrier DNA 10 µl,PEG/LiAc 500 µl并吸打几次混匀,30℃水浴30 min (15 min时翻转6-8次混匀)。

3. 将管放42℃水浴15 min (7.5 min时翻转6-8次混匀)。

4. 5000 rpm离心 40 s弃上清,ddH2O 400 µl 重悬,离心 30s弃上清。

5. ddH2O 50 µl重悬,涂板(筛选平板可根据转化质粒的筛选标记选择SD缺陷型平板),29℃培养48-96 h。


● P450还原酶的诱导表达

1. WAT11菌株中的P450还原酶由GAL10-CYC1启动子驱动,在进行诱导表达时,要去除培养基中的葡萄糖,加入2%的半乳糖或同时分别加入2%的半乳糖和1%棉子糖。两种碳源配方都可以诱导P450还原酶的表达,但在只添加半乳糖的培养基中酵母生长缓慢,蛋白表达量低;同时添加棉子糖可提高P450还原酶的表达量。

2. 半乳糖的诱导时间以至少12小时为宜,不同的实验要求,实验者可根据需要确定诱导时间。


培养基配制

① YPDA (1L) (唯地CAT#:YM1020):      

     Tryptone                          20g

     Yeast extract                    10g

     0.2% adenine                  15ml

     补水到 950ml,用盐酸调PH到6.5;

     Agar          20g(for plates only)

     121℃,15 min高压灭菌;

     待培养基温度降到55℃时,加入已过滤的40% 葡萄糖 50 ml。


③ 0.2% adenine (1L) (唯地CAT#:YC6030)

   Adenine    2g; 补水到1L;溶解后高压灭菌或0.22µm 滤膜过滤除菌。


④ pYES2蛋白诱导用诱导培养基:SGR/-Ura (唯地CAT#:YEM3134):

pESC-HIS/LEU/TRP/URA蛋白诱导分别用诱导培养基:SGR/-His、SGR/-Leu、SGR /-Trp、SGR/-Ura(唯地CAT#:YEM3131/3132/3133/3134),1L配方如下:

   Yeast Nitrogen base                        6.7g

   Dropout (对应的氨基酸混合物)    适量(按说明书)

   补水到 800ml,调PH至5.8,121℃,15 min高压灭菌;

   待培养基温度降到55℃时,加入已过滤的carbon source:100 ml 20% 半乳糖,100 ml 10% 棉子糖。

② SD medium (1L) (唯地CAT#:YM3101-YM3611):

     Yeast Nitrogen base                   6.7g

     葡萄糖                                           20g

     Dropout                    适量(按说明书)

     补水到1L,调PH至5.8;

     Agar                     20g(for plates only)

     121℃,15 min高压灭菌。



注意事项

1. 感受态细胞最好在冰上融化,转化高浓度的质粒可相应减少最终用于涂板的菌量,同时转化2-3种质粒时可增加质粒的用量。

2. WAT11酵母菌株对高温敏感,最适生长温度为27-30℃;高于31℃,生长速度和转化效率呈指数下降。

3. 菌落变粉不是污染,是酵母细胞生长中一个常见现象。当细胞在平板培养几天后,平板上的Adenine被酵母消耗完毕,酵母试图通过自身代谢途径合成Adenine以供利用,然而,有些菌株的ADE2基因被破坏,Adenine合成途径受阻;又由于其ADE4,5,6,7,8基因均正常,所以造成中间产物P-ribosylamino imidazole (AIR) 在细胞中积累而使菌落变为粉红色。

4. 酵母在缺陷培养基中生长速度比YPDA培养基慢,培养基中缺陷成分越多,生长越慢,以转化涂板为例:涂YPDA平板29℃,48 h培养可见直径1 mm克隆;涂SD单缺平板29℃,48-60 h培养可见直径1 mm克隆,涂SD双缺平板29℃,60-80 h培养可见直径1 mm克隆,涂SD三缺或四缺平板平板29℃,80-90h培养可见直径1 mm克隆。