自诱导培养基

产品说明
唯地生物开发,适合富含二硫键的蛋白表达的自诱导培养基。在其中补充含有更多小肽的蛋白胨、酵母粉、非蛋白分子伴侣、氨基酸混合物、硫胺素、腺嘌呤、葡萄糖、乳糖、镁离子、钠离子、钾离子、胱氨酸、GSH、GSSG配制成AIM-DIP Broth,主要用于大肠杆菌中由T7启动子诱导蛋白表达的试验(或IPTG诱导蛋白表达的试验)。与传统的LB-IPTG蛋白诱导方法不同,自诱导培养基允许T7启动子系统的自动调节,诱导表达,无需检测培养基中菌体OD值,无需添加IPTG,并且蛋白表达量比IPTG诱导的蛋白量更高。
产品规格
货号
规格
目录价
AIM1025L-01
5×0.5L
218
AIM1025L-02
10×0.5L
398
产品内容
室温干燥
室温干燥
4°C
-20°C
-20°C
包装名称
包装含量
保存条件
保存时间
AIM-DIP Broth
23g (可配0.5L AIM-DIP 液体培养基)(5袋/10袋)
室温干燥
12个月
AIM葡萄糖溶液(已过滤)(3ml/6ml)
24个月
AIM乳糖溶液 (已过滤)(25ml/50ml)
24个月
非蛋白分子伴侣Ⅱ(已过滤)(25ml/50ml)
24个月
100mML-胱氨酸 (已过滤)(50ml/100ml)
24个月
L-还原型谷胱甘肽GSH(3.75g/7.5g)
24个月
L-氧化型谷胱甘肽GSSG(0.75g/1.5g)
-20°C
24个月
产品组分与配方
![]()
N-Z-amine AS
Yeast Extract
产品组分
AIM-DIP Broth 配方g/L
产品组分
AIM-DIP Broth 配方g/L
Tryptone
10g
非蛋白分子伴侣Ⅰ
0.47g
6g
硫胺素,腺嘌呤等
------
5g
镁离子,钠离子,钾离子 ------
------
HY-YEST 444
5g
Glucose(葡萄糖)
------
17种氨基酸混合物
2g
Lactose (乳糖)
------
PH值( 25°C):7.0±0.2,本产品加入PH7.0的去离子水后PH接近7.0,可不调ph值直接使用。
产品说明
AIM-DIP Broth:唯地生物开发,适合富含二硫键的蛋白表达的自诱导培养基。在其中补充含有更多小肽的蛋白胨、酵母粉、非蛋白分子伴侣、氨基酸混合物、硫胺素、腺嘌呤、葡萄糖、乳糖、镁离子、钠离子、钾离子、胱氨酸、GSH、GSSG配制成AIM-DIP Broth,主要用于大肠杆菌中由T7启动子诱导蛋白表达的试验(或IPTG诱导蛋白表达的试验)。与传统的LB-IPTG蛋白诱导方法不同,自诱导培养基允许T7启动子系统的自动调节,诱导表达,无需检测培养基中菌体OD值,无需添加IPTG,并且蛋白表达量比IPTG诱导的蛋白量更高。
自诱导培养基作用机制:在葡萄糖存在时,大肠杆菌优先利用葡萄糖,葡萄糖作为半乳糖操纵子的阻遏因子阻止细菌利用α-乳糖,促进高密度生长。一旦培养基中的葡萄糖被耗尽(通常发生在对数中后期),乳糖被ß-半乳糖苷酶转换成异乳糖(葡萄糖-1,6-半乳糖),而后者作为IPTG诱导型启动子的诱导剂,促进乳糖阻遏物从启动子的DNA结合位点上释放,启动重组蛋白的表达。对于含有DE3元件的大肠杆菌,异乳糖使T7lac启动子去阻遏,诱导lacUV5启动子表达T7 RNA聚合酶。通过这种方式,在原核表达菌生长到某一特定点时蛋白表达自发开始,无需监测细胞密度(OD600)和
添加IPTG。与传统IPTG诱导的蛋白表达过程相比,使用自动诱导培养基极大地方便和简化了试验流程。
注意:哪种自诱导培养基更适合目标蛋白的表达需要做预试验确认,不同蛋白需要不同的自诱导培养基进行诱导表达,很难在诱导之前预测结果。
AIM-DIP Broth自诱导培养基的工作原理
1. 当需要在大肠杆菌细胞质中表达富含二硫键的蛋白时,向培养基中补充特定比例的GSH和GSSG,可调控细胞内氧化还原环境,促进二硫键正确折叠,提高蛋白可溶性。大肠杆菌的细胞质天然是一个强还原性环境,这能防止胞内蛋白质的巯基被意外氧化,但对于需要在胞质中形成二硫键的重组蛋白来说,这会导致二硫键无法形成,或形成后立刻被还原。补充GSH/GSSG混合物可以改变胞质的氧化还原平衡,使其从一个强还原状态转变为一个允许并促进二硫键缓慢、正确形成的“适度氧化”状态。GSH/GSSG水溶液易失活,只能现配先用,配成水溶液后用0.45um的滤头过滤除菌,GSH、GSSG可分别配成100mM、10mM的水溶液后过滤除菌(若不能完全溶解,可用微波炉加热促溶,注意不要让温度超过70度)。GSH/GSSG应按比例使用,有两种固定的比例:1,GSH(5mM即1.5g/L)+GSSG(0.5mM即0.3g/L);2, GSH(2mM即0.6g/L)+GSSG(0.5mM即0.3g/L),前者高效还原错误形成的二硫键,适用于二硫键结构简单、对错误折叠敏感的蛋白;后者提供更强的氧化力,有利于形成二硫键,适用于二硫键多且复杂、难以氧化的蛋白。
2. 当需要在大肠周质空间中表达富含二硫键的蛋白时,在培养基中添加L-胱氨酸有助于维持周质空间的氧化环境,L-胱氨酸可以被转运到周质空间,直接被DsbA等酶利用,促进目标蛋白的二硫键快速形成,促进蛋白形成正确构象。试剂盒中的100mM L-胱氨酸溶液已经过滤除菌,可直接使用,使用浓度为2mM。
使用方法
取AIM-DIP Broth 粉剂培养基一袋,加适量双蒸水溶解后(溶液体积根据后续补加溶液体积计算,一袋培养基对应总体积为0.5L),121℃-20min高压灭菌,灭菌后待温度降到60度以下,加入0.5ml AIM葡萄糖溶液,5ml AIM乳糖溶液,混匀后可根据目标蛋白的表达空间选择加入L-胱氨酸或GSH/GSSG。加入L-胱氨酸的培养基可保存一周;加入GSH、GSSG的培养基应立即使用,不可保存。
注意:非蛋白分子伴侣Ⅱ可加可不加,不同蛋白有不同的最适浓度,实验者可根据目标蛋白不同设置不同的浓度梯度,非蛋白分子伴侣Ⅱ的梯度一般为:0、1%、2%。
蛋白自诱导方法:
1. 准备含有目的质粒的原核表达大肠杆菌单菌落(可质粒转化感受态涂板,也可平板划线)。
2. 小摇接菌:将单菌落接种到含有1-3ml 含相应抗生素的液体LB/2YT的透气试管中。
3. 137℃,200 rpm过夜摇菌约10-24h,菌体摇浓,一般要求OD600>2.0。
4. 按2-5%的比例接菌到AIM-DIP Broth自诱导培养基中,
A. 30-37度诱导:200-300rpm,摇菌8-24h。
B. 15-25度诱导:200-300rpm,摇菌12-48h。
C. 若所表达蛋白为毒性蛋白或菌体生长过慢,可先在37度摇菌,待菌体OD600=0.8左右时降低到目标温度。
5. 最佳摇菌时间与所表达蛋白有关,为找到最佳诱导时间可在不同诱导时间点取样检测蛋白表达量。
注意事项
1. AIM-DIP Broth自诱导培养基需先补水,121℃-20min高压灭菌后使用;若发现有严重吸潮现象,停止使用。
2. 少部分蛋白用自诱导培养基的方法诱导蛋白可能不如常规IPTG诱导表达系统,遇到此类蛋白可使用常规的IPTG诱导方法。
3. 大肠杆菌表达菌株必须含有lac操纵子(包括lacY和lacZ),如BL21(DE3)、Rosetta(DE3)、TB1、Mg1655等;而T7 Express lysY等菌株不含完整的lac操纵子,不能使用自诱导培养基。
产品规格
货号
规格
目录价
AIM1025L-01
5×0.5L
218
AIM1025L-02
10×0.5L
398
产品内容
室温干燥
室温干燥
4°C
-20°C
-20°C
包装名称
包装含量
保存条件
保存时间
AIM-DIP Broth
23g (可配0.5L AIM-DIP 液体培养基)(5袋/10袋)
室温干燥
12个月
AIM葡萄糖溶液(已过滤)(3ml/6ml)
24个月
AIM乳糖溶液 (已过滤)(25ml/50ml)
24个月
非蛋白分子伴侣Ⅱ(已过滤)(25ml/50ml)
24个月
100mML-胱氨酸 (已过滤)(50ml/100ml)
24个月
L-还原型谷胱甘肽GSH(3.75g/7.5g)
24个月
L-氧化型谷胱甘肽GSSG(0.75g/1.5g)
-20°C
24个月
产品组分与配方
![]()
N-Z-amine AS
Yeast Extract
产品组分
AIM-DIP Broth 配方g/L
产品组分
AIM-DIP Broth 配方g/L
Tryptone
10g
非蛋白分子伴侣Ⅰ
0.47g
6g
硫胺素,腺嘌呤等
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5g
镁离子,钠离子,钾离子 ------
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HY-YEST 444
5g
Glucose(葡萄糖)
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17种氨基酸混合物
2g
Lactose (乳糖)
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PH值( 25°C):7.0±0.2,本产品加入PH7.0的去离子水后PH接近7.0,可不调ph值直接使用。
产品说明
AIM-DIP Broth:唯地生物开发,适合富含二硫键的蛋白表达的自诱导培养基。在其中补充含有更多小肽的蛋白胨、酵母粉、非蛋白分子伴侣、氨基酸混合物、硫胺素、腺嘌呤、葡萄糖、乳糖、镁离子、钠离子、钾离子、胱氨酸、GSH、GSSG配制成AIM-DIP Broth,主要用于大肠杆菌中由T7启动子诱导蛋白表达的试验(或IPTG诱导蛋白表达的试验)。与传统的LB-IPTG蛋白诱导方法不同,自诱导培养基允许T7启动子系统的自动调节,诱导表达,无需检测培养基中菌体OD值,无需添加IPTG,并且蛋白表达量比IPTG诱导的蛋白量更高。
自诱导培养基作用机制:在葡萄糖存在时,大肠杆菌优先利用葡萄糖,葡萄糖作为半乳糖操纵子的阻遏因子阻止细菌利用α-乳糖,促进高密度生长。一旦培养基中的葡萄糖被耗尽(通常发生在对数中后期),乳糖被ß-半乳糖苷酶转换成异乳糖(葡萄糖-1,6-半乳糖),而后者作为IPTG诱导型启动子的诱导剂,促进乳糖阻遏物从启动子的DNA结合位点上释放,启动重组蛋白的表达。对于含有DE3元件的大肠杆菌,异乳糖使T7lac启动子去阻遏,诱导lacUV5启动子表达T7 RNA聚合酶。通过这种方式,在原核表达菌生长到某一特定点时蛋白表达自发开始,无需监测细胞密度(OD600)和
添加IPTG。与传统IPTG诱导的蛋白表达过程相比,使用自动诱导培养基极大地方便和简化了试验流程。
注意:哪种自诱导培养基更适合目标蛋白的表达需要做预试验确认,不同蛋白需要不同的自诱导培养基进行诱导表达,很难在诱导之前预测结果。
AIM-DIP Broth自诱导培养基的工作原理
1. 当需要在大肠杆菌细胞质中表达富含二硫键的蛋白时,向培养基中补充特定比例的GSH和GSSG,可调控细胞内氧化还原环境,促进二硫键正确折叠,提高蛋白可溶性。大肠杆菌的细胞质天然是一个强还原性环境,这能防止胞内蛋白质的巯基被意外氧化,但对于需要在胞质中形成二硫键的重组蛋白来说,这会导致二硫键无法形成,或形成后立刻被还原。补充GSH/GSSG混合物可以改变胞质的氧化还原平衡,使其从一个强还原状态转变为一个允许并促进二硫键缓慢、正确形成的“适度氧化”状态。GSH/GSSG水溶液易失活,只能现配先用,配成水溶液后用0.45um的滤头过滤除菌,GSH、GSSG可分别配成100mM、10mM的水溶液后过滤除菌(若不能完全溶解,可用微波炉加热促溶,注意不要让温度超过70度)。GSH/GSSG应按比例使用,有两种固定的比例:1,GSH(5mM即1.5g/L)+GSSG(0.5mM即0.3g/L);2, GSH(2mM即0.6g/L)+GSSG(0.5mM即0.3g/L),前者高效还原错误形成的二硫键,适用于二硫键结构简单、对错误折叠敏感的蛋白;后者提供更强的氧化力,有利于形成二硫键,适用于二硫键多且复杂、难以氧化的蛋白。
2. 当需要在大肠周质空间中表达富含二硫键的蛋白时,在培养基中添加L-胱氨酸有助于维持周质空间的氧化环境,L-胱氨酸可以被转运到周质空间,直接被DsbA等酶利用,促进目标蛋白的二硫键快速形成,促进蛋白形成正确构象。试剂盒中的100mM L-胱氨酸溶液已经过滤除菌,可直接使用,使用浓度为2mM。
使用方法
取AIM-DIP Broth 粉剂培养基一袋,加适量双蒸水溶解后(溶液体积根据后续补加溶液体积计算,一袋培养基对应总体积为0.5L),121℃-20min高压灭菌,灭菌后待温度降到60度以下,加入0.5ml AIM葡萄糖溶液,5ml AIM乳糖溶液,混匀后可根据目标蛋白的表达空间选择加入L-胱氨酸或GSH/GSSG。加入L-胱氨酸的培养基可保存一周;加入GSH、GSSG的培养基应立即使用,不可保存。
注意:非蛋白分子伴侣Ⅱ可加可不加,不同蛋白有不同的最适浓度,实验者可根据目标蛋白不同设置不同的浓度梯度,非蛋白分子伴侣Ⅱ的梯度一般为:0、1%、2%。
蛋白自诱导方法:
1. 准备含有目的质粒的原核表达大肠杆菌单菌落(可质粒转化感受态涂板,也可平板划线)。
2. 小摇接菌:将单菌落接种到含有1-3ml 含相应抗生素的液体LB/2YT的透气试管中。
3. 137℃,200 rpm过夜摇菌约10-24h,菌体摇浓,一般要求OD600>2.0。
4. 按2-5%的比例接菌到AIM-DIP Broth自诱导培养基中,
A. 30-37度诱导:200-300rpm,摇菌8-24h。
B. 15-25度诱导:200-300rpm,摇菌12-48h。
C. 若所表达蛋白为毒性蛋白或菌体生长过慢,可先在37度摇菌,待菌体OD600=0.8左右时降低到目标温度。
5. 最佳摇菌时间与所表达蛋白有关,为找到最佳诱导时间可在不同诱导时间点取样检测蛋白表达量。
注意事项
1. AIM-DIP Broth自诱导培养基需先补水,121℃-20min高压灭菌后使用;若发现有严重吸潮现象,停止使用。
2. 少部分蛋白用自诱导培养基的方法诱导蛋白可能不如常规IPTG诱导表达系统,遇到此类蛋白可使用常规的IPTG诱导方法。
3. 大肠杆菌表达菌株必须含有lac操纵子(包括lacY和lacZ),如BL21(DE3)、Rosetta(DE3)、TB1、Mg1655等;而T7 Express lysY等菌株不含完整的lac操纵子,不能使用自诱导培养基。




